ОБНБиология моря Russian Journal of Marine Biology

  • ISSN (Print) 0134-3475
  • ISSN (Online) 3034-526X

Морфология клеток крови обыкновенного тюленя (антура) Phoca vitulina Linnaeus, 1758 Командорских островов

Код статьи
S3034526XS0134347525020041-1
DOI
10.7868/S3034526X25020041
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 51 / Номер выпуска 2
Страницы
101-110
Аннотация
Впервые дана подробная характеристика клеток крови обыкновенного тюленя (антура) из популяции Командорских островов. Приведены данные о составе, размерах и соотношении эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов периферической крови неполовозрелых и половозрелых особей. Представлена библиотека микрофотографий всех типов клеток периферической крови антура. Морфология клеток крови тюленя в целом соответствует таковой других видов ластоногих, однако в мазках крови обнаружены нейтрофилы с тельцами Делё, реактивные лимфоциты и гиперсегментированные нейтрофилы. В лейкоцитарной формуле всех исследованных антуров выявлено повышенное количество эозинофилов (10–25%), у половозрелых особей — большее количество эозинофилов (p = 0.04) и больших лимфоцитов (p = 0.005); у неполовозрелых особей обнаружены более высокие показатели моноцитов (p = 0.04) и телец Хауэлла–Жолли в эритроцитах (p = 0.03). У двух половозрелых особей в мазках крови присутствовали микрофилярии и ядерные эритроциты.
Ключевые слова
обыкновенный тюлень антур Phoca vitulina морфология клеток крови эритроциты лейкоциты тромбоциты
Дата публикации
03.12.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
28

Библиография

  1. 1. Гордеев И.И., Болтнев Е.А., Суворова Т.А. и др. Клеточный состав периферической крови байкальской нерпы Phoca sibirica // Биол. внутренних вод. 2023. № 6. С. 892–896.
  2. 2. Кавцевич Н.Н. Морфологические и цитохимические особенности клеток крови морских млекопитающих в связи с адаптацией к среде обитания / Автореф. дис. … докт. биол. наук. Петрозаводск, 2011. 39 с.
  3. 3. Кавцевич Н.Н., Ерохина И.А., Светочев В.Н. и др. Экологические и эколого-физиологические исследования ластоногих Баренцева, Белого и Карского морей в 2015–2019 гг. // Тр. Кольского науч. центра РАН. 2020. № 4–7. С. 198–214.
  4. 4. Кавцевич Н.Н., Минзюк Т.В. Клеточный состав крови серых тюленей различного возраста // Докл. Академии наук. 2010. Т. 432. № 4. С. 552–555.
  5. 5. Кавцевич Н.Н., Минзюк Т.В. Возрастные особенности клеточного состава крови тюленей // Тр. ВНИРО. 2017. Т. 167. С. 78–95.
  6. 6. Тихомиров Э.А. Рост тела и развитие органов размножения северотихоокеанских настоящих тюленей // Изв. ТИНРО. 1968. Т. 62. С. 216–243.
  7. 7. Alho A.M., Marcelino I., Colella V. et al. Dirofilaria immitis in pinnipeds and a new host record // Parasites Vectors. 2017. V. 10. № 1. Art. ID142. https://doi.org/10.1186/s13071-017-2073-0
  8. 8. CRC handbook of marine mammal medicine: 3rd ed. / Eds. F. Gulland, L.A. Dierauf, K.L. Whitman. Boca Raton: CRC Press, 2018.
  9. 9. Greig D.J., Gulland F.M., Rios C.A., Hall A.J. Hematology and serum chemistry in stranded and wild-caught harbor seals in central California: reference intervals, predictors of survival, and parameters affecting blood variables // J. Wildl. Dis. 2010. V. 46. № 4. P. 1172–1184. https://doi.org/10.7589/0090-3558-46.4.1172
  10. 10. Harvey J.W. Veterinary hematology: A diagnostic guide and color atlas. St. Louis, Mo.: Saunders/Elsevier, 2012. 384 p. https://doi.org/10.1016/C2009-0-39565-3
  11. 11. Harvey J.W. The feline blood film: 2. Leukocyte and platelet morphology // J. Feline Med. Surg. 2017. V. 19. P. 747–757. https://doi.org/10.1177/1098612X17706471
  12. 12. Koolwal M.S. Anticoagulant EDTA induced storage effect (artifacts) on peripheral blood cells // J. Med. Sci. Clin. Res. 2018. V. 6. № 1. P. 32430–32433.
  13. 13. Lefebvre K.A., Quakenbush L., Frame E. et al. Prevalence of algal toxins in Alaskan marine mammals foraging in a changing arctic and subarctic environment // Harmful Algae. 2016. V. 55. P. 13–24. https://doi.org/10.1016/j.hal.2016.01.007
  14. 14. Lehnert K., Schwanke E., Hahn K. et al. Heartworm (Acanthocheilonema spirocauda) and seal louse (Echinophthirius horridus) infections in harbour seals (Phoca vitulina) from the North and Baltic Seas // J. Sea Res. 2016. V. 113. P. 65–72. http://dx.doi.org/10.1016/j.seares.2015.06.014
  15. 15. Mamaev E.G. A new method of counting Phoca vitulina ssp. stejnegeri (Phocidae, Carnivora) on the Commander Islands (Russia) // Nat. Conserv. Res. 2018. V. 3. № 4. P. 44–58. https://dx.doi.org/10.24189/ncr.2018.047
  16. 16. Narasimha A., Kumar H., Prasad C.S. Anticoagulant induced artefacts in peripheral blood smears // Indian J. Hematol. Blood Transfus. 2008. V. 24. № 2. P. 43–48. https://doi.org/10.1007/s12288-008-0027-6
  17. 17. Norman S.A., Beckett L.A., Miller W.A. et al. Variation in hematologic and serum biochemical values of belugas (Delphinapterus leucas) under managed care // J. Zoo Wildl. Med. 2013. V. 44. № 2. P. 376–388. https://doi.org/10.1638/2012-0172R
  18. 18. Pace C.N., Haulena M., Drumm H.E. et al. Causes and trends of harbor seal (Phoca vitulina) mortality along the British Columbia coast, Canada 2012–2020 // J. Wildl. Dis. 2023. V. 59. № 4. P. 629–639. https://doi.org/10.7589/JWD-D-22-00172
  19. 19. Stacy N.I., Isaza R., Wiedner E. First report of changes in leukocyte morphology in response to inflammatory conditions in Asian and African elephants (Elephas maximus and Loxodonta africana) // PLoS One. 2017. V. 12. № 9. Art. ID e0185277. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0185277
  20. 20. Stacy N.I., Nollens H. Hematology of marine mammals // Schalm’s veterinary hematology: 7th ed. Eds. M.B. Brooks, K.E. Harr, D.M. Seelig et al. Wiley, 2022. P. 1104–1113.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека